Recombinant Cynomolgus MMP-9 Protein

    Lambda核酸外切酶（LambdaExonuclease）高度特异性地作用于5'端磷酸化的双链DNA主要通过以下几个方面实现：1.**结构特异性识别**：Lambda核酸外切酶具有识别特定DNA结构的能力，特别是5'端磷酸化的双链DNA。这种识别能力通常由酶的活性位点结构决定，能够与5'-磷酸基团形成特定的相互作用。2.**酶活性位点**：酶的活性位点含有氨基酸残基，这些残基能够与5'-磷酸基团形成氢键或其他非共价相互作用，从而稳定酶与DNA的结合。3.**切割机制**：Lambda核酸外切酶通过水解5'-磷酸二酯键来降解DNA链。它从5'端开始，逐个移除核苷酸，直到遇到非5'-磷酸化的末端或遇到结构上的障碍。4.**低活性对非特异性底物**：对于5'-羟基（OH）末端的DNA或单链DNA，Lambda核酸外切酶的活性降低，因为这些底物缺乏与酶活性位点结合所需的特异性相互作用。5.**酶动力学**：Lambda核酸外切酶对5'-磷酸化双链DNA的酶动力学参数（如Km和Vmax）与对非特异性底物的参数有差异，这反映了其对特异性底物的高亲和力和高催化效率。6.**过程性（Processivity）**：一旦Lambda核酸外切酶结合到特异性底物上，它可以连续移除多个核苷酸，而不需要频繁地与底物解离和重新结合，这增加了酶的效率。将合成的gRNA与Cas9 NLS蛋白混合，形成复合物。由于Cas9 NLS蛋白两端都有NLS，有助于复合物快速进入细胞核。Recombinant Cynomolgus MMP-9 Protein,His Tag

1stStrandcDNASynthesisKit(RNaseH-)通常提供几种不同类型的引物用于启动cDNA的合成。这些引物包括：1.**Oligo(dT)引物**：这种引物通常与mRNA的poly(A)尾部互补配对，适用于从真核生物的mRNA中合成cDNA。它能够产生大量全长cDNA，特别是当模板来源于真核生物时。2.**随机六聚体引物（RandomHexamers）**：这些引物是一组随机的六核苷酸序列，可以与RNA模板的任何部分结合，从而启动cDNA的合成。它们适用于mRNA、rRNA、tRNA和长非编码RNA等多种类型的RNA模板。3.**基因特异性引物（GeneSpecificPrimers）**：这些引物是针对特定基因序列设计的，可以用于从总RNA或mRNA中合成特定基因的cDNA。它们通常用于当需要选择性地扩增特定基因或基因家族时。在选择引物时，需要考虑RNA模板的来源、RNA的质量和特性以及后续实验的需求。例如，如果RNA模板具有复杂的二级结构或较高的GC含量，可能需要使用随机引物以提高cDNA合成的效率。另外，如果后续实验是qPCR，可以将Oligo(dT)与随机引物混合使用，以提高qPCR结果的真实性和重复性。Recombinant Human PDGF-BB ProteinFnCas12a的双链或单链DNA靶标都能激发其反式剪切活性，即在形成三元复合物后，针对非特异序列ssDNA的剪切。

pA-Tn5转座酶是一种经过特殊改造的融合蛋白，由ProteinA和高活性的Tn5转座酶组成，具有以下主要应用：1.**高通量测序建库**：pA-Tn5转座酶可以用于快速构建用于高通量测序的DNA文库，通过其转座酶活性实现DNA片段化，同时加上测序接头，简化了传统DNA测序建库的多步过程。2.**CUT&Tag技术**：这是一种新兴的蛋白质与DNA相互作用研究方法，pA-Tn5转座酶利用ProteinA与特定抗体结合，将转座酶带到目标蛋白附近进行DNA切割和标签添加，实现对蛋白质结合位点的高通量测序分析。CUT&Tag技术具有高特异性、低背景噪音、高灵敏度、良好重复性等优点，适用于表观遗传学、干细胞等领域的研究。3.**ATAC-seq**：pA-Tn5转座酶也可用于ATAC-seq实验，这是一种研究染色质可及性的方法，通过转座酶在没有核酸酶消化的情况下切割染色质DNA，然后在切割位点加上测序接头，进行后续的测序分析。4.**转录组测序快速建库**：有研究开发了基于Tn5转座酶的转录组测序快速建库方法，例如SHERRY方法，它利用Tn5转座酶直接作用于RNA/DNA杂交链，简化了建库过程，适用于单细胞转录组测序，提高了样本的利用率和测序速度。

1stStrandcDNASynthesisKit(RNaseH-)主要用于从RNA模板合成链cDNA，而不是直接用于线性RNA的放大。然而，合成的cDNA可以作为模板用于后续的线性RNA放大过程，这通常涉及以下几个步骤：1.**cDNA合成**：使用1stStrandcDNASynthesisKit(RNaseH-)按照试剂盒的说明进行操作，从线性RNA模板合成链cDNA。2.**第二链cDNA合成**：在某些情况下，可能需要合成双链cDNA。这可以通过使用DNA聚合酶和第二链合成试剂来完成，从而获得完整的双链cDNA。3.**线性RNA放大**：一旦获得了cDNA，可以使用体外转录(IVT,InVitroTranscription)技术来放大RNA。这通常涉及以下步骤：-使用含有RNA聚合酶启动子序列的特定引物对cDNA进行PCR扩增。-使用含有RNA聚合酶识别位点的引物进行体外转录反应，以合成大量RNA拷贝。4.**RNA纯化**：体外转录产生的RNA需要通过适当的方法（如柱层析或沉淀）进行纯化，以去除DNA模板、未反应的核苷酸和其他杂质。5.**RNA质量检测**：使用凝胶电泳或生物分析仪检测RNA的质量和大小，确保RNA的完整性和纯度。FnCas12a的C端融合了核定位信号(NLS)，有助于FnCas12a进入细胞后定位至细胞核，提高基因编辑效率。

Benzonase核酸酶残留检测试剂盒的高重复性和准确性主要得益于以下几个方面：1.**基于荧光探针的检测方案**：该试剂盒使用荧光标记的DNA探针，当探针被Benzonase核酸酶切割时，会产生荧光信号，这种变化可以用来定量分析Benzonase的残留量。此方法成功避免了ELISA检测方法的一些限制，例如抗体的亲和性能差异、非特异性反应以及蛋白浓度差异的问题。2.**高灵敏度**：试剂盒能够检测到低达约0.002U（约0.003ng）的Benzonase或BeyoZonase，样品中的Benzonase浓度约为0.0002U/μl或0.3pg/μl，这为准确检测提供了技术保障。3.**操作简便快速**：检测过程简单，只需加入BenzDetectionSolution和待检样品，在定量PCR仪上15分钟内即可完成检测，减少了操作过程中可能出现的人为误差。4.**标准曲线的建立**：试剂盒中提供了不同浓度的标准品，通过这些标准品可以建立标准曲线，从而准确计算出样品中的Benzonase残留量。5.**环境控制**：建议在超净工作台或生物安全柜等洁净环境中进行检测，以避免样品受环境核酸酶的影响，保证检测结果的准确性。FnCas12a产品不含DNA内切酶和外切酶，也不含RNA酶，保证了实验的准确性和重复性。Recombinant Human Neogenin Protein,hFc Tag

FnCas12a特异性识别并剪切带PAM序列的双链DNA（dsDNA）靶标，其PAM序列为5'-TTN-3'，与Cas9的PAM序列不同。Recombinant Cynomolgus MMP-9 Protein,His Tag

磁珠本身并不直接参与电泳过程，但它们可以用于电泳后的样品处理，特别是在核酸（DNA或RNA）的提取和纯化过程中。以下是使用磁珠进行电泳后样品处理的一般步骤：1.**凝胶电泳**：-首先，将DNA或RNA样品通过凝胶电泳进行分离。凝胶通常是琼脂糖或聚丙烯酰胺凝胶，根据样品的大小和类型选择合适的凝胶浓度和缓冲体系。2.**观察和切割**：-电泳完成后，使用紫外线照射凝胶并使用适当的染料（如EB或SYBRGreen）对DNA或RNA进行染色，以在紫外光下观察到DNA或RNA的条带。3.**样品提取**：-确定目标DNA或RNA条带后，使用干净的工具（如切割器或移液枪）从凝胶中切割出含有目标分子的凝胶片段。4.**磁珠准备**：-根据磁珠试剂盒的说明书，准备磁珠。通常包括磁珠的重悬和可能的表面修饰，以确保它们能够特异性地结合目标核酸。5.**样品与磁珠混合**：-将切割出的凝胶片段转移到含有磁珠的溶液中，温和地混合以促进磁珠与核酸的结合。6.**磁分离**：-将含有磁珠和核酸的混合物置于磁分离架上，利用磁场使磁珠快速聚集在管底，从而实现与溶液的分离。7.**洗涤**：-移除未结合的溶液，向磁珠上加入洗涤液，再次进行磁分离以去除杂质。Recombinant Cynomolgus MMP-9 Protein,His Tag