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zo-1的免疫荧光,步骤如下:1.细胞在盖片上生长融合到95%-100%时,从孵箱中取出。2.用预温的1×PBS洗3次,每次10分钟。3.4%的甲醛室温固定20-30分钟。4.1×PBS洗3次,每次10分钟。5.0.2%TritonX-100透化2-5分钟。6.1×PBS洗3次,每次10分钟。7.5%BSA室温封闭30分钟。8.加一抗(用1%BSA稀释)放在湿盒里,4度过夜。9.1×PBS洗3次,每次10分钟。10.加二抗(用1%BSA稀释)30分钟,闭光。11.1×PBS洗3次,每次10分钟。12.95%甘油封片。注:4%甲醛,0.2%Triton,5%BSA均用1×PBS稀释。免疫荧光技术可以用于研究细胞迁移和细胞黏附。CY3免疫抗体

CY3免疫抗体,免疫

免疫荧光实验的注意事项:对荧光标记的抗体的稀释,要保证抗体的蛋白有一定的浓度,一般稀释度不应超过1:20,抗体浓度过低,会导致产生的荧光过弱,影响结果的观察。染色的温度和时间需要根据各种不同的标本及抗原而变化,染色时间可以从10min到数小时,一般30min已足够。染色温度多采用室温(25℃左右),高于37℃可加强染色效果,但对不耐热的抗原(如流行性乙型脑炎病毒)可采用0-2℃的低温,延长染色时间。低温染色过夜较37℃30min效果好的多。CY3免疫抗体在实际工作中,荧光抗原技术应用较少,因此通常将其称为荧光抗体技术或免疫荧光技术。

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细胞免疫荧光步骤对大家来说一定是很陌生的,他是一种抗原抗体反应,好像对我们来说他显得很遥远的样子,因为我们并不了解他能做什么,通过这种技术可以让我们对抗原或抗体的性质、定位一次来分析出更多的数据。细胞免疫荧光,这对很多人来说都是一次听说这个东西,也不知道他对我们会有什么好处与坏处,科学研究就是这样子的,普通老百姓是不会明白其中的道理的,但是这些研究也是确实的在我们的生活中取得了成果,能够让大家过的更加舒适。

细胞免疫荧光步骤是什么呢?步骤:1. 细胞一定要贴在玻片上(较好可以放入24孔板),为后面照像打基础。细胞密度适中,大约60-75%满片即可,否则容易脱片。2. 取出细胞后用4%多聚甲醛固定15分钟,现用现配。(以下各步骤切毋使玻片干燥)3. PBS冲洗;4. 0.1%Triton作用20分钟;5. PBS冲洗;6. 10%正常血清封闭10分钟;7. 加入一抗,4度孵育过夜(找个小瓶盖将小玻片支起来,抗体就不容易溢出),还要记住“砸片”,就是抗体从较高处落到片子上,以分布均匀。抗体稀释度1:60,较常用!8. PBS冲洗4次,各5分钟;9加入荧光二抗,室温30分钟。抗体稀释度1:400,较常用!10. 90%甘油封片。也很关键阿,多封几次才有体会。12. 避光保存,或到显微镜下观察。免疫荧光技术可以用于研究环境污染和毒物作用。

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直接免疫荧光:单抗体(一抗)用于免疫染色和检测目标蛋白。荧光素结合的一抗直接与目标抗原结合,并使用成像显微镜观察。直接免疫荧光的优点:由于无需为两种抗体选择不同的物种反应性,从而降低了物种交叉反应性问题。与间接免疫荧光相比,时间缩短(操作步骤减少)。直接免疫荧光的缺点:不允许通过二抗进行信号放大;检测灵敏度降低;荧光素结合一抗的选择有限;与使用荧光二抗的检测相比,更昂贵。间接免疫荧光:使用两种抗体(一抗和二抗)进行免疫染色并检测目标蛋白。首先,用特异性一抗标记目标蛋白。然后,荧光素结合的二抗(与一抗具有不同的物种反应性)识别结合的抗原-抗体复合物并与一抗结合。由于一个以上的二抗可以与一抗结合,荧光信号被放大,提供了更高的检测灵敏度。免疫荧光技术可以通过荧光信号显示和检查细胞或组织内的抗原或半抗原物质。CY3免疫抗体

免疫荧光技术在免疫学研究中发挥重要作用,帮助揭示细胞和分子的功能和相互关系。CY3免疫抗体

免疫荧光间接法测抗体实验注意事项:1)荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,会使荧光减弱。2)每次试验时,需设置以下三种对照:①阳性对照:阳性血清+荧光标记物②阴性对照:阴性血清+荧光标记物③荧光标记物对照:PBS+荧光标记物3.已知抗原标本片需在操作的各个步骤中,始终保持湿润,避免干燥。4.所滴加的待检抗体标本或荧光标记物,应始终保持在已知抗原标本片上,避免因放置不平使液体流失,从而造成非特异性荧光染色。CY3免疫抗体

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