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糖原染色生物技术优势：（1）拥有针对不同组织的特殊固定液；（2）拥有日本进口的各种染料，保证切片染色效果；（3）拥有千锤百炼的专业人才队伍，保证实验快速、有效的完成。实验样本要求：（1）植物材料在选择时须尽可能不损伤植物体或所需要的部分；（2）动物材料取用时需对动物施以麻醉，常用的麻醉剂有氯仿和，或将动物杀死后迅速取出所需要的组织；（3）取材必须新鲜，这一点对于从事细胞生物学研究尤为重要，应该尽可能割取生活着的组织块，并随即投入固定液，固定液与组织块的体积比应在10:1；（4）切取材料时刀要锐利，避免因挤压细胞使其受到损伤；（5）切取的材料应小而薄，便于固定液迅速渗入内部。一般厚度不超过3mm，大小不超过5×5m㎡。故PAS染色有助于三种急性白血病类型的鉴别。安徽咨询糖原染色试剂盒直销价

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年较先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色试剂盒不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛不Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。PAS技术是很少可检测不同种类的黏液物质(如糖原、黏蛋白和糖蛋白)的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要冸确鉴别黏液物质(如黏蛋白或糖原)，需加入糖原消化步骤。大多数情冴下可用α–淀粉酶或麦芽淀粉酶来催化糖原的糖苷键水解，形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标冸唾液的考虑，不主张应用唾液。上海品质好的糖原染色试剂盒单价常需要分别选用相应的显示这些成分的染色方法进行特殊染色。

糖类染色实验——糖原染色：高碘酸氧化液：高碘酸 0.5 g，蒸馏水 100 ml。此液溶解后放入冰箱中待用。Schiff 染色液：碱性复红 1 g，1mol/L 盐酸 20 ml，焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠）2 g，双重蒸馏水 200 ml。先将 200 ml 双重蒸馏水煮沸，稍有火焰，加入 1 g 碱性复红，再煮沸 1 min，冷却至 50℃ 加入 20 ml1mol/L 盐酸，待 35℃ 时加入 2 g 焦亚硫酸钠。室温中 2 h 之后见稍带红色，5 h 之后变为无色液体。棕色瓶内装好，放入冰箱中保存待用。1. 石蜡组织切片，常规脱蜡至水。2. 蒸馏水洗 2 次。3. 高碘酸氧化液处理 10～20 min。4. 充分蒸馏水洗。5. Shciff 液染色，染色 10～20 min（如果室温在 15℃ 以下时，可在湿盒内加入温水而加快反应）。6. 流水冲洗 3 min（对于着色较深的切片可适当缩短时间）。7. 用 Mayer 明矾-苏木**染细胞核 3～5 min。8. 0.5％ 盐酸乙醇液分化 30s，自来水浸洗 2 min。

糖原D-PAS染色液：使用方法：1、两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。2、一张切片入37℃淀粉酶溶液处理1h。另一张不用淀粉酶溶液处理，入水中1h作为对照。3、流水冲洗两张切片各5～10min。4、入过碘酸溶液，室温放置5～8min，一般不宜超过10min。5、自来水冲洗1次，再用蒸馏水浸洗2次。6、入Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染10～20min。7、自来水冲洗10min。8、入Mayer苏木素染色液，染细胞核1～2min。9、(可选)酸性乙醇分化液分化2～5s。10、自来水冲洗10～15min，更换蒸馏水清洗使其返蓝。11、二甲苯透明，中性树胶封固。糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：PAS染色时需于暗处加盖反应，染色时间10～20min（染色时间长短取决于试剂的质量和环境温度，SO浓度高，染色时间适当缩短；环境温度高，染色时间也应适当缩短，反之则需适当延长反应时间）。染色过程中不能接触伊红，以免造成颜色误差[4]。作糖原染色时，较好作消化对照，即取两张连续切片，其中一张脱蜡至水后，用1％淀粉酶于37℃消化30min，水洗后与不经消化处理的切片一起置0.5％高碘酸液氧化，如经消化处理的切片染色阴性，不经消化处理的切片染色阳性，即肯定为糖原[6]。偏重亚硫酸钠（钾）溶液配置后，不能保存，因此，必须现配现用，用过一次即应废弃。各种试剂必须是化学纯或者分析纯。器皿、染色缸必须洁净而干燥。拥有千锤百炼的专业人才队伍，保证实验快速、有效的完成。江苏咨询糖原染色试剂盒厂家供应

生物膜与细胞器的研究。安徽咨询糖原染色试剂盒直销价

糖原pas染色液配制及使用方法：1、常规固定，常采用 10%的福尔马林，常规脱水包埋。 2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水；冰冻切片直接入蒸馏水。 3、自来水冲洗 2～3min，再用蒸馏水浸洗 2 次。 4、入过碘酸溶液，室温放置，一般不宜超过 10min。 5、自来水冲洗 1 次，再用蒸馏水浸洗 2 次。 6、入 Schiff Reagent，置于室温阴暗处浸染。 7、自来水冲洗 10min。 8、入苏木素染色液，染细胞核。 9、酸性乙醇分化液分化。 _x000c_10、自来水冲洗 10～15min，更换蒸馏水清洗，使其返蓝。 11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明，中性树胶封固。安徽咨询糖原染色试剂盒直销价

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