江苏如何使用糖原染色试剂盒

糖原染色在使用过程中需要注意以下几个方面：PAS染色时需于暗处加盖反应，染色时间10～20min（染色时间长短取决于试剂的质量和环境温度，SO浓度高，染色时间适当缩短；环境温度高，染色时间也应适当缩短，反之则需适当延长反应时间）。染色过程中不能接触伊红，以免造成颜色误差[4]。作糖原染色时，较好作消化对照，即取两张连续切片，其中一张脱蜡至水后，用1％淀粉酶于37℃消化30min，水洗后与不经消化处理的切片一起置0.5％高碘酸液氧化，如经消化处理的切片染色阴性，不经消化处理的切片染色阳性，即肯定为糖原[6]。偏重亚硫酸钠（钾）溶液配置后，不能保存，因此，必须现配现用，用过一次即应废弃。各种试剂必须是化学纯或者分析纯。器皿、染色缸必须洁净而干燥。腺泡状软组织肉瘤与化感瘤：前者棒状小体糖原染色为阳性。江苏如何使用糖原染色试剂盒

糖原染色：1、概况PAS染色法（Periodic Acid-Schiff stain）在组织学上，主要用来检测组织中的糖类。过碘酸把糖类相邻两个碳上的羟基氧化成醛基，再用Schiff试剂和醛基反应使呈现紫红色。2、原理PAS染色又称过碘酸雪夫染色，糖原染色。一般用来显示糖元和其它多糖物质。过碘酸能使细胞内的多糖乙二醇基氧化成二醛，再与Schiff氏液的无色品红结合，红色，定位于胞浆上。3、应用随着医学实验技术的发展，糖原染色应用的范围更加普遍，如用以证明与鉴别细胞内空泡状的性质，心肌病变及其他心血管疾病的诊断 ，糖原累积病诊断和研究 ，糖尿病的诊断和研究 ，用于某些的诊断等。江西糖原染色试剂盒销售厂家糖原的染色在临床病理诊断上具有重要意义。

糖原染色：方法固定液Carnoy固定液：纯酒精60 ml　冰醋酸10ml氯仿 30ml,也可以选用75%酒精配制1) 过碘酸酒清夜配法: 过碘酸(HIO .2H O) 0.4g　95%酒精 35ml　M/5醋酸钠(2.72g+蒸馏水100ml) 5ml蒸馏水10ml 保存于冰箱内,用棕色瓶,可用两周.2)Schiff氏液: 0.5克碱性品红加入100毫升蒸馏水中,时时摇动三角瓶5分钟,使之充分溶解.冷却至50℃后过滤加入10毫升1N盐酸.冷却至25℃,加入0.5-1克偏重硫酸钠,在室温中至少静置24小时,然后密封冰箱保存.3)Schiff氏酒**配置　Schiff氏液 11.5ml1NHCI 0.5ml纯酒精 23ml4)亚硫酸水 1%偏重亚硫酸蒸馏水180ml的树胶溶解。

糖类染色实验——糖原染色：高碘酸氧化液：高碘酸 0.5 g，蒸馏水 100 ml。此液溶解后放入冰箱中待用。Schiff 染色液：碱性复红 1 g，1mol/L 盐酸 20 ml，焦亚硫酸钠（偏重亚硫酸钠）2 g，双重蒸馏水 200 ml。先将 200 ml 双重蒸馏水煮沸，稍有火焰，加入 1 g 碱性复红，再煮沸 1 min，冷却至 50℃ 加入 20 ml1mol/L 盐酸，待 35℃ 时加入 2 g 焦亚硫酸钠。室温中 2 h 之后见稍带红色，5 h 之后变为无色液体。棕色瓶内装好，放入冰箱中保存待用。1. 石蜡组织切片，常规脱蜡至水。2. 蒸馏水洗 2 次。3. 高碘酸氧化液处理 10～20 min。4. 充分蒸馏水洗。5. Shciff 液染色，染色 10～20 min（如果室温在 15℃ 以下时，可在湿盒内加入温水而加快反应）。6. 流水冲洗 3 min（对于着色较深的切片可适当缩短时间）。7. 用 Mayer 明矾-苏木**染细胞核 3～5 min。8. 0.5％ 盐酸乙醇液分化 30s，自来水浸洗 2 min。过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低，不宜过染。

糖原染色――检查项目的注意细节：其判断标准随细胞不同而异，一般分为5级，即0～4级。糖原染色――检查项目的一般步骤：(1)新鲜干燥血片或骨髓片于95%乙醇中固定10min，蒸馏水冲洗数次，待干。(2)浸入10g/L过碘酸水溶液中10min，蒸馏水冲洗数次，待完全干燥。(3)放入雪夫液30min，用自来水冲洗约5min，再用蒸馏水冲洗，然后用20g/L甲基绿复染20min，水洗，晾干。糖原染色――检查项目结果解读：(1)新鲜干燥血片或骨髓片于95%乙醇中固定10min，蒸馏水冲洗数次，待干。(2)浸入10g/L过碘酸水溶液中10min，蒸馏水冲洗数次，待完全干燥。(3)放入雪夫液30min，用自来水冲洗约5min，再用蒸馏水冲洗，然后用20g/L甲基绿复染20min，水洗，晾干。冷冻切片染色时间尽量要短。浙江品牌糖原染色试剂盒

切出的石蜡切片要好，不能有皱褶或者刀痕，切片不能太厚。江苏如何使用糖原染色试剂盒

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