合肥外泌体提取试剂

外泌体的提取、分离方法：聚合物沉淀法。聚合物沉淀法用于分离病毒和其他的生物大分子已有50多年历史，近几年，将其作为一种新的方法来分离外泌体。目前，市场已经有应用聚乙二醇(polyethyleneglycol,PEG)溶液提取外泌体的试剂盒，较常见的是SystemBiosciences公司的ExoQuick®和ExoQuick-TC®kits，该试剂盒操作简单不需要特殊的仪器，但是价格昂贵。提取外泌体的试剂盒主要成分是PEG8000(30%~50%),将试剂盒与体液或细胞培养液4℃孵育过夜，之后再低速离心。外泌体（Exosome）发现于1986年，是一种直径约30~100nm的双层膜囊泡状结构小体。合肥外泌体提取试剂

外泌体提纯试剂盒的特色与优势：纯化和富集的完整血浆/血清，尿液和细胞培养基中外泌体的可用于功能研究；样本输入量多样；无需耗时的超速离心，过滤或特殊注射器；无需沉淀试剂，也无需过夜培养；无需蛋白酶处理；适用于多种物种；外泌体被纯化并且不含任何其他RNA结合蛋白；可以使用NanoSight®或电子显微镜分析纯化的外泌体，以评估近似外泌体大小范围和浓度。外泌体（exosomes）是一种能被机体内大多数细胞分泌的直径大约为30~150nm的具有脂质双层膜的微小膜泡。它普遍存在并分布于各种体液中，携带和传递重要的信号分子，形成了一种全新的细胞间信息传递系统，影响细胞的生理状态并与多种疾病的发生与进程密切相关石家庄外泌体提取试剂直销价近年来，随着人们对外泌体的研究和认识加深。

外泌体的提取、分离方法：梯度密度离心法。研究发现，外泌体的密度在1.1~1.19kg·L-1之间，因此，可以采用密度梯度离心法来分离外泌体。该方法是将超速离心结合蔗糖密度梯度或蔗糖垫结合，原理是先除去非囊泡物质，再通过梯度密度浓缩提取外泌体，该方法可以得到相对较为纯净的外泌体。传统的梯度密度方法通常需要离心16h，但是2012年，研究者[15]使用了62~90h才分离出某些确切囊泡，因此，该方法可能不足以沉淀所有的外泌体。如果离心时间不充足，污染物质可能和外泌体保持在相同的密度层，特别是这个密度范围又比较宽。

有的外泌体分离方法需要高速离心，需要使用大型机器，耗费近24小时的时间才能获得，非常不便。而高离心力也可能破坏囊泡。降低样品的质量。这项研究有望解决这一难题。在论文中，研究人员们提供了一种通过微流体和声学的独特组合从体液样品中捕获外泌体的新颖方法。他们开发的原始声学分选装置由两个倾斜的声学换能器和一个微流体通道组成，当这些传感器产生的声波相互碰撞时，形成产生一系列压力节点的驻波。每当细胞或颗粒流过通道并遇到一个节点时，压力会将细胞引导离开中心一点点。细胞移动的距离取决于大小和其他属性（如可压缩性），这样，当到达通道末尾时，不同大小和性质的细胞就能够被分离开来。这种方法分离得到的外泌体，基本上不改变其生物或物理特征，为开发评估人类健康以及疾病诊断和进展提供了有吸引力的新方法。外泌体提纯试剂盒的特色与优势：无需耗时的超速离心，过滤或特殊注射器。

外泌体提取：尺寸排阻色谱。尺寸排阻色谱（Size-exclusionchromatography，SEC）是基于大小而非分子量实现分离大分子。该技术应用填充多孔聚合物微球的柱子，分子根据其直径通过微球，半径小的分子需要更长的时间才能通过色谱柱的孔隙迁移，而大分子则从色谱柱中更早地洗脱。尺寸排阻色谱可以精确分离大小分子。此外，可以将不同的洗脱溶液应用于该方法。与离心方法相比，色谱分离已被证明具有更多优势，因为通过色谱分离的外泌体不受剪切力的影响，这可能会改变囊泡的结构。目前，SEC是一种普遍接受的分离血液和尿液中外泌体的技术。不过，该方法耗时较长，不适合大量样本处理如纯度和回收率低，杂蛋白较多（假阳性），颗粒大小不均一，产生难以去除的聚合物。合肥外泌体提取试剂

外泌体的提取方法：密度梯度离心。合肥外泌体提取试剂

外泌体表面有其特异性标记物（如CD63、CD9蛋白），用包被抗标记物抗体的磁珠与外泌体囊泡孵育后结合，即可将外泌体吸附并分离出来。磁珠法具有特异性高、操作简便、不影响外泌体形态完整等优点，但是效率低，外泌体生物活性易受pH和盐浓度影响，不利于下游实验，难以普遍普及。聚乙二醇（PEG）可与疏水性蛋白和脂质分子结合共沉淀，早先应用于从血清等样本中收集菌类，现在也被用来沉淀外泌体，其原理可能与竞争性结合游离水分子有关。利用PEG沉淀外泌体存在不少问题：比如纯度和回收率低，杂蛋白较多（假阳性），颗粒大小不均一，产生难以去除的聚合物，机械力或者吐温-20等化学添加物将会破坏外泌体等，因此发表文章时易受质疑。如纯度和回收率低，杂蛋白较多（假阳性），颗粒大小不均一，产生难以去除的聚合物。合肥外泌体提取试剂