取材（1）材料新鲜：取材组织愈新鲜愈好，人体组织一般在离体后，动物组织在处死后迅速固定，以保证原有的形态学结构。（2）组织块的大小：所取组织块较理想的体积为2.0cm×2.0cm×0.3cm，以使固定液能迅速而均匀地渗入组织内部，但根据制片材料和目的不同，组织块的较理想体积也不同，如制作病理外检、科研切片，其组织块可以薄取0.1～0.2cm即可，这样可以缩短固定脱水透明的时间，若制作教学切片厚取0.3 ～0.5cm，这样可以同一蜡块制作出较多的教学切片。（3）勿挤压组织块: 切取组织块用的刀剪要锋利，切割时不可来回锉动。夹取组织时切勿过紧，以免因挤压而使组织、细胞变形。（4）规范取材部位: 要准确地按解剖部位取材，病理标本取材按照各病变部位、性质的不同，根据要求规范化取材。（5）选好组织块的切面:根据各***的组织结构，决定其切面的走向。纵切或横切往往是显示组织形态结构的关键，如长管状***以横切为好。（6）保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用水冲洗干净后再放入固定液中。（7）保持组织的原有形态:新鲜组织固定后，或多或少会产生收缩现象，有时甚至完全变形。为此可将组织展平，以尽可能维持原形。新乡市维克科教仪器有限公司的病理切片了解一下。香港质量组胚病理切片
浸蜡包埋:等量二甲苯与软蜡1次，软蜡2次，硬蜡2次，以上各级每次1-1.5小时，用纸盒或金属包埋盒包埋。切片贴片烤片:载玻片上涂少许蛋白甘油，切片厚度6-8微米，在贴片容器中贴片，入37。C恒温箱中烘烤24小时。脱蜡入水:二 甲苯2次，每次10min,****酒精中2次,每次5min,****以下的浓度每次2min,下行至蒸馏水。 以下程序按教材要求进行。注意事项: 在0.5%的盐酸酒精中分色过程中，数秒后，必须要在显微镜下镜检，见细胞核呈蓝色，细胞质呈无色或灰色即可。此步骤非常关键， 一定要不间断镜检。 中国澳门**组胚病理切片病理切片一般用在什么地方？
在切病理切片之前要先磨好切片刀，每次磨好后拿一个蜡块试切一下。每次磨好刀后，应将磨刀石用盖子盖好，以防灰尘掉在磨刀石上，用有灰的磨刀石磨刀，会使切片刀产生许多细小的缺口。现在很多单位都买了磨刀机，磨刀机用来开刀锋和磨缺口的确不错，但由于磨刀的角度和时间不易精确掌握，故效果并不理想。根据我们的经验，真正的锋刃很难用机器磨出来。一次性刀片在很大程度上解决了这个问题。如用一次性刀片，必须及时更换刀口。一个刀口切小标本不应超过20～25只蜡块，切大标本不应超过10～15只蜡块。
病理切片操作规范：巨检结束后点清块数，记录签收。组织包埋完成后进行清点蜡块数量。大标本固定时间不得少于6小时；小标本不得少于3小时。固定液必须及时更换，固定后必须流水冲洗。固定、脱水温度不得高于37℃。包埋用石蜡必须过滤。试剂必须及时更换。切片刀必须锋利，用力均匀，切片厚度3—5微米。切片完整无污染，无皱褶。胃镜、穿刺等小活检组织切片必须作连续性切片，数量不得少于8张。组织片贴附，应在除去标签位置后玻片的中间。封固前必须经酒精充分脱水，二甲苯透明，湿封。
病理切片取材时对大体标本(肉眼标本)绘制图象，进行仔细描述。包括形状、天小， 硬度，颜色，病灶(或可疑病变)部位对所取的组织应定位编号。切取各组织块时，切勿挤压损伤，对典型或具有教学和科研价值的肉眼标本，不能因取材而对标本造成人为的“病变”。肠粘膜组织上沾有少量粪便，也不应以手拭去或以水洗去。固定液的量要充足，应为固定组织的10倍。组织采取应在正常与病灶交界之处。组织形状应该切为方形或长方形状，这样有利于制片。切不可以形状定位，组织厚薄要均匀。 病理切片用途新乡维克科教来为您解答。正规组胚病理切片质量放心可靠
病理切片的制作过程有哪些？香港质量组胚病理切片
病理切片制作时将部分有病变的组织或脏器经过各种化学品和埋藏法的处理，使之固定硬化，在切片机上切成薄片，粘附在玻片上，染以各种颜色，供在显微镜下检查，以观察病理变化，作出病理诊断。 病理切片操作规范： 一、巨检结束后点清块数，记录签收。 二、组织包埋完成后进行清点蜡块数量。 三、大标本固定时间不得少于6小时；小标本不得少于3小时。 四、固定液必须及时更换，固定后必须流水冲洗。 五、固定、脱水温度不得高于37℃。 六、包埋用石蜡必须过滤。 七、试剂必须及时更换。 八、切片刀必须锋利，用力均匀，切片厚度3—5微米。切片完整无污染，无皱褶。 九、胃镜、穿刺等小活检组织切片必须作连续性切片，数量不得少于8张。 十、组织片贴附，应在除去标签位置后玻片的中间。 十一、封固前必须经酒精充分脱水，二甲苯透明，湿封。 十二、封片时不得有气泡，不得有树胶外溢。 十三、标签必须贴于玻片左侧，编号字迹必须清楚。 十四、取材后的制片工作一般应在2个工作日内完成。 十五、切片完成后交付医师时必须按照记录当面清点香港质量组胚病理切片
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