如果切片出现厚薄不均：可能是刀、刀座及蜡块未夹紧，组织太硬，或玻片机主轴太向前，或玻片机已磨损。玻片出现裂痕：可能是刀有缺口，石蜡内有杂质，组织内有钙化、骨片或有线结, 也可能会有棉纸纤维等。玻片不连片，切不下片，玻片很厚，或者玻片后蜡块发白，内陷：组织脱水不佳。补救办法：可先将蜡块溶解，取出组织，放入加热水浴的**内（80℃），30～60分钟，再进行透明浸蜡包埋玻片，也许会好一点。新乡市维克科教仪器有限公司生产和供应各类生物显微玻片、病理切片等。
怎么选择合适的病理切片？**组胚病理切片择优推荐
将玻片放到显微镜下，可以看到神奇的微观世界，在观察之前，玻片的制作，放置都需要小心谨慎，防止玻片的损坏，以及在观察的时候出现失误，那么你知道在制作玻片的时候经常遇到的问题？组织发脆：一般是脱水、透明、浸蜡时间过长、温度过高，并与组织本身质地也有关，在玻片时，边切边用嘴向蜡片吹气，可能会好些。玻片卷起，可能是刀不锋利，或刀锋在另一面，或刀角度过大，玻片太厚等等。蜡片弯曲：可能是刀锋不均，玻片刀未磨直，玻片刀与蜡块不平行。
**组胚病理切片择优推荐病理切片为什么要进行固定呢？
火棉胶切片法所使用的支持剂是火棉胶。这种方法的优点是包埋过程不经高温，可以避免组织收缩及变脆，适用精细材料(如脑)的切片，也因火棉胶有韧性，切片不致有折卷或破裂，适于大块组织及多空洞的组织(如脑、眼球)的切片。其操作时间短并且步骤简单，所以不易出现组织脱片情况，但是这种方法不能普遍应用于全部基础实验和临床病理诊断中，不处理的玻片直接使用，组织脱片情况非常严重，甚至会造成研究的中断，而直接购买已经处理过的玻片不仅价格昂贵，而且处理效果不一致，所以多数研究人员选择自己处理玻片。
制作组胚病理切片保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用水冲洗干净后再放入固定液中。 保持组织的原有形态:新鲜组织固定后，或多或少会产生收缩现象，有时甚至完全变形。为此可将组织展平，以尽可能维持原形。 制作病理切片固定 (1)小块组织固定法:这是相当常用的方法，从人体或动物体取下的小块组织，须立即置入液态固定剂中进行固定，通常，标本与固定液的比例为1:4~20，但组织块不宜过大过厚，否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。 (2)注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部，或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。 (3)蒸汽固定法:比较小而厚的标本，可采用锇酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，则应在血片未干燥前采用锇酸或甲醛蒸汽接触固定。 相当常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。常规病理切片主要制作过程有哪些？
制作病理切片固定：注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部，或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。蒸汽固定法:比较小而厚的标本，可采用锇酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，则应在血片未干燥前采用锇酸或甲醛蒸汽接触固定。还有一种平时非常便于使用的方法就是：固定液由10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。病理切片和病理蜡块有什么区别？**组胚病理切片择优推荐
病理切片取材是很重要的。**组胚病理切片择优推荐
制作病理切片脱水透明：标本经过固定和冲洗后，组织中含有较多的水分，必须将组织块内的水分置换出来，这一过程叫做脱水。无论是用石蜡切片，还是用火棉胶切片，都必须除去组织中所含水分，因含水组织与石蜡、火棉胶等包埋材料不相容，常用的脱水剂为一系列不同浓度的乙醇。脱水的步骤是:80%、90%、95%各种浓度乙醇2小时，此过程可用脱水机自控完成。**也是一种脱水能力很强的脱水剂，但因其脱水能力很强，对组织有剧烈收缩作用，在制作科研、教学切片时一般不用该试剂。因乙醇、**等不溶于石蜡，还要经过一个能溶于石蜡的溶剂替代过程称为透明。 **组胚病理切片择优推荐
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