切片是如何正确制作的？在制作的过程中药注意哪些事项？维克小编为你介绍：把切片刀架上，固定紧，然后将蜡块在切片机固定器上夹紧。先修块，左手转推进器，右手转轮盘，直到把组织全部切出，这时左手松掉推进器而持毛笔，右手旋围轮盘，蜡片切成后，右手用小镊子摄蜡片，左手用毛笔沿刀锋轻轻把蜡片分开，切面朝下把切片放入50℃水中，摊平后用镊子轻轻将连续蜡片分开，再用载玻片捞起，蜡片应捞在玻片的1/3处，蜡片厚度一般在3~5μm。病理切片注意事项①切片前蜡块要冷冻，这样容易切片，特别在夏秋季一定要冷冻，但不能把刚包埋好的热蜡块冷冻，否则会造成蜡块裂痕，一夹就碎。②写号码用质量碳素墨水或用一边毛砂处理的载玻片时用铅笔写号即可。不需配制蛋白甘油。③如遇难切的蜡片时，可用与蜡块切面差不多大小的薄纸潮湿后贴在蜡块上切片，然后将附有蜡片的一面朝上放入水中漂片。④如遇易脱片组织（如血凝块、脑组织）时，可将载玻片上涂少许蛋白甘油后再捞片或用多聚赖氨酸处理过的玻片。⑤总是切不出完整的蜡片，或皱缩或卷片，可能是刀不快。病理切片是病理标本的一种。组胚病理切片采购
病理切片操作规范：巨检结束后点清块数，记录签收。组织包埋完成后进行清点蜡块数量。大标本固定时间不得少于6小时；小标本不得少于3小时。固定液必须及时更换，固定后必须流水冲洗。固定、脱水温度不得高于37℃。包埋用石蜡必须过滤。试剂必须及时更换。切片刀必须锋利，用力均匀，切片厚度3—5微米。切片完整无污染，无皱褶。胃镜、穿刺等小活检组织切片必须作连续性切片，数量不得少于8张。组织片贴附，应在除去标签位置后玻片的中间。封固前必须经酒精充分脱水，二甲苯透明，湿封。
切片时如果遇到此类蜡块 ,可将蜡块在冰盘冷却片刻或用湿的棉花沾一下 ,蜡块接触刀刃用力不能太猛太重 ,以减少这一人为现象的出现。如果发现蜡带上的组织切片出现空洞 ,只要蜡块中的组织充足 ,应尽量再缓慢切片 ,直到空洞消失。另外 , 空洞也可能是因为组织在浸蜡时 ,蜡液中有残留的空气存在 所致。这种情况在肺组织标本中尤为多见 ,即使连续切片空 洞也不容易消失。切片需要做免疫组化染色的可以放在温箱过 夜 ,温度必须低于60 ℃,否则抗体会受到破坏。
制作病理切片浸蜡、包埋：使石蜡浸入组织中，取代组织中含有的透明剂。包埋:将浸蜡后的组织置于融化的固体石蜡中，石蜡凝固后，组织即被包在其中，称蜡块，此过程称为包埋。制作病理切片切片和贴片：修整蜡块:可视其组织的大小，在组织边缘约0.1~0.2cm处，切去余蜡部分，否则易造成组织皱缩不平。准备好切片用具:切片刀、毛笔、眼科镊子(弯)、漂烘温控仪。安装蜡块:将修好的蜡块安装在金属或木制持蜡器上。安装切片刀:将切片刀安装在切片机的刀台上，把刀台上的紧固螺丝旋紧，使切片时不产生振动，能保持一定的切片厚度。 病理切片一般要用显微镜吗？
制作组胚病理切片保持材料的清洁:组织块上如有血液、污物、粘液、食物、粪便等，可用水冲洗干净后再放入固定液中。 保持组织的原有形态:新鲜组织固定后，或多或少会产生收缩现象，有时甚至完全变形。为此可将组织展平，以尽可能维持原形。 制作病理切片固定 (1)小块组织固定法:这是相当常用的方法，从人体或动物体取下的小块组织，须立即置入液态固定剂中进行固定，通常，标本与固定液的比例为1:4~20，但组织块不宜过大过厚，否则固定液不能迅速渗透。故取组织块的大小一般为2.0cm×2.0cm×0.3cm。 (2)注射、灌注固定法:某些组织块由于体积过大或固定液极难渗入内部，或需要对整个脏器或整个动物体进行固定。这时宜采用注射固定或灌注固定法。将固定液注入血管，经血管分支到达整个组织和全身，从而得到充分的固定。 (3)蒸汽固定法:比较小而厚的标本，可采用锇酸或甲醛蒸汽固定法。如血液涂片，则应在血片未干燥前采用锇酸或甲醛蒸汽接触固定。 相当常用的固定液有10%甲醛固定液和95%乙醇固定液。病理切片购买时需要注意哪些问题？内蒙古***组胚病理切片
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生物切片从制作的方法来分，有涂片、压片、装片(也叫整装法)、磨片和切片等。下面，小编将给大家讲解几种制作切片的方法，以及怎样对切片的载玻片进行处理。载玻片是用显微镜观察东西时用来放东西的玻璃片或石英片，制作样本时，将细胞或组织切片放在载玻片上，将盖玻片放置其上，用作观察。盖玻片是盖在载玻片上的材料上的，可以避免液体和物镜相接触，以免污染物镜，并且可以使被观察的细胞上方处于同一平面，即：距离物镜距离相同，使观察到的图像更清晰。 组胚病理切片采购
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组织切片发脆：一般是脱水、透明、浸蜡时间过长、温度过高，并与组织本身质地也有关，解决办法取出组织，放...
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