脱盐、更换缓冲液或渗滤是从含有生物分子的溶液中去除盐分或溶剂的重要方法。盐分去除或缓冲液更换可通过超滤管来完成,具体过程是浓缩样本,弃去滤出液,然后向浓缩液中加入任何所需的溶剂,恢复到样本原先的体积。"洗出"的过程可反复进行,直到杂质的浓度被充分降低。关于超滤管的常见问题与解答:Q:超滤管的膜材质是什么?A:超滤管的膜材质为默克密理博特有的Ultracel再生纤维素膜,生产工艺严格,截留分子量明确而准, 蛋白吸附损失小。Q:如果要用超滤的方法分离两种蛋白,那么这两个蛋白的大小需要相差多少?A:按照经验,建议两个蛋白的分子量要相差 一个数量级(10倍)。超滤离心管还可用于检测药品样品中的残留物和污染物,并进行质量监测和控制。郑州高离心力离心管生产厂
超滤离心管可以灭菌吗?1. 超滤离心管使用75%的乙醇消毒。2. 不能121℃灭菌,否则会变形,不论是是密理博、颇尔还是赛多利斯的都不能。3. 超滤管应当干燥保存,买回来的时候就是干的。当然也可以湿润保存,但是应当保存在20%的乙醇中,是为了防止没洗去的残留的液体长菌堵膜。4. 有人说湿润保存不能干,指的是卷式和板式超滤膜。离心管是一个简单的可以承受高转速压力的管子,比如离一些样品,分离出上清沉淀。超滤离心管会有一个类似于内管和外管的两个部分,内管中是带有一定分子量的膜,当高速离心时,分子量比它小的就漏到下面的管子(即外管)中了,分子量比它大的就截留在上面(即内管中),就是超滤的原理.常用于浓缩样品。湖州高离心力离心管定制超滤离心管也可用于水处理过程中去除污染物和杂质。
超滤离心管是否可以重复使用:离心超滤管通常不能消毒再次性使用。由于单管价格并不便宜,不少人尝试重复使用----经验是用蒸馏水清洗膜表面多次,离心一次到两次,那种可以反向离心的小管子可以加蒸馏水浸泡后反向多离心一次,会好些。可重复用于同一样品,不用时可用蒸馏水浸泡,但是要防止细菌污染。不同样品就不要混用了。有人说泡在20%酒精、1N的NaOH(氢氧化钠)中,防止长菌,而且防干,只要超滤膜侵了水,就不可以再让它干,但也有人说会破坏膜结构。反正厂家一般不支持重复用。多次重复使用会堵塞滤膜上的孔径,甚至出现漏液现象,影响实验结果。
超滤离心管,备有四种材质的超滤膜:聚醚砜、三醋酸纤维素、再生纤维素和Hydrosart,可根据不同要求灵活选用。 使用注意事项 (1)选择合适的超滤管。通常应截留分子量不应大于目的蛋白分子量的1/3,比如目的蛋白分子量为35kDa,就可以选择10kDa截留分子量的超滤管。若目的蛋白分子量为10kD左右,则可以用截留分子量3kD的超滤管。认真阅读使用说明书,注意超滤膜对各种化学物质的耐受程度有所不同。 (2)新买来的超滤是干燥的,使用前加入超纯水,水量完全过膜,冰浴或冰箱里预冷几分钟。然后将水倒出,即可加入蛋白液,加入的多少,以不超过管顶的白线为准。操作要轻,加入蛋白液前,超滤管需要插在冰上预冷。 (3)平衡。质量和重心二者都要达到平衡。注意转速和加速度不可太快,否则直接损坏超滤膜。开始离心超滤(离心机预冷至4度)。不同离心机的转速 rpm换算成g之后,有所不同。离心机的加速度调至较低档,减小对膜的压力。在使用超滤离心管时,需要注意保持管子清洁、干燥和无污染。
使用后用0.1M NaOH泡24h,然后20%乙醇浸泡保存。这个我是听老板们说的,的确乙醇泡完后孔径会增大,基本就是5-10KD较大,也就是说如果你的蛋白在21KD以上,应该没问题。或者可以不用乙醇泡,用NaOH洗之后直接用无菌水保存,每周换一下液体,应该没有问题。看看说明书不就结了!我原来在CRO的时候一直是重复用的,也没见什么不好啊!短期会用的话,用20%的乙醇泡着,回头拼命用millipore的水充干净,然后在用样品缓冲液平衡一下就好,至于有些人说的改变孔径,也没那么大影响的,你至少跟目的蛋白分子量差别3倍的截留分子量才安全的不是吗?1个月以内不用的话,建议用100mM的NaOH保存!更长时间的话加0.02%的叠氮钠,但那个东西强致疾病物,不建议使用。理论上截留目标物,孔径应选1/3~1/5的膜;透过目标物,孔径应选5-10倍的膜。使用超滤离心管时应注意遵循正确的操作程序和实验室规范,并定期进行设备维护和保养。湖州离心管定做
超滤离心管可以有效地去除溶液中的杂质,使样品更纯净。郑州高离心力离心管生产厂
质量和重心都应该平衡。注意速度和加速度不要太快,否则会直接损坏超滤膜。开始离心超滤(离心预冷至4度〉。膜和旋转轴的方向根据说明进行调整(对于角向离心机,膜垂直于轴〉。在实际应用中,一般的速度开度比手动低,可以延长离心管的使用寿命。4。当浓缩到剩余的1毫升时,取中国产的504.1l布拉德福德溶液,加104 l流过,看是否变蓝,以判断ur管是否漏蛋白。如果管道泄漏,重新倒入上层,然后流过新管道开始超滤。为了准确确定管道是否泄漏,用5 mg/ml BSA离心10分钟,然后将其穿过,大致运行胶水或Bradf ord,继续添加剩余的蛋白质溶液以浓缩(在冰上操作以防止蛋白质加热〉,直到所有浓缩物都添加完毕。离心过程中应注意是否有蛋白质沉淀,导致堵塞。如果发生沉淀,有必要确定沉淀的具体原因是蛋白质浓度过高还是缓冲液不当。郑州高离心力离心管生产厂