膜片钳实验实验,记录和分析数据准备工作就绪后即可进行实验操作,数据记录和分析。对电极持续施加一个1mV、10~50ms的阶跃脉冲刺激,电极入水后电阻约4~6MΩ,此时在计算机屏幕显示框中可看到测试脉冲产生的电流波形。开始时增益不宜设得太高,一般可在1~5mV/pA,以免放大器饱和。由于细胞外液与电极内液之间离子成分的差异造成了液结电位,故一般电极刚入水时测试波形基线并不在零线上,须首先将保持电压设置为0mV,并调节“电极失调控制“使电极直流电流接近于零。用微操纵器使电极靠近细胞,当电极尖锐端与细胞膜接触时封接电阻指示Rm会有所上升,将电极稍向下压,Rm指示会进一步上升。通过细塑料管向电极内稍加负压,细胞膜特性良好时,Rm一般会在1min内快速上升,直至形成GΩ级的高阻抗封接。一般当Rm达到100MΩ左右时,电极尖锐端施加轻微负电压(-30~-10mV)有助于GΩ封接的形成。此时的现象是电流波形再次变得平坦,使电极超极化由-40到-90mV,有助于加速形成封接。为证实GΩ封接的形成,可以增加放大器的增益,从而可以观察到除脉冲电压的首尾两端出现电容性脉冲尖锐端电流之外,电流波形仍呈平坦状。应用膜片钳技术可以直接观察和分辨单离子通道电流及其开闭时程。无锡药理学膜片钳技术原理及步骤

膜片钳法的各种模式:膜外面向内模式:从全细胞模式将膜片微电极向上提起可得到切割分离的膜片,由于它的细胞膜内侧面面对膜片微电极腔内液,膜外面自然封闭而对外,所以这个模式被称为莫外面向内模式。开放细胞吸附膜内面向外模式:将细胞吸附模式的膜片以外的某部位的胞膜进行机械地破坏,经破坏孔调控细胞内液并在细胞吸附状态下进行内面向外的单一离子通道记录。穿孔囊泡膜外面向外模式:从穿孔膜片模式将膜片微电极向上提起,便在微电极尖锐端处形成一个膜囊泡,如果条件较好,此膜囊泡内不只有细胞质因子还可有线粒体等细胞器存在。无锡药理学膜片钳电生理技术哪家好膜片钳使用的注意事项:干燥季节请先用手触摸金属框架释放身体的静电。

膜片钳的应用:在心血管药理研究中的应用:随着膜片钳技术在心血管方面的普遍应用,对血管疾病和药物作用的认识不只得到了不断更新,而且在其病因学与药理学方面还形成了许多新的观点。正如诺贝尔基金会在颁奖时所说:“Neher和Sadmann的贡献有利于了解不同疾病机理,为研制新的更为有效的药物开辟了道路”。创新药物研究与高通量筛选:在离子通道高通量筛选中主要是进行样品量大、筛选速度占优势、信息量要求不太高的初级筛选。较近几年,分别形成了以膜片钳和荧光探针为基础的两大主流技术市场。将电生理研究信息量大、灵敏度高等特点与自动化、微量化技术相结合,产生了自动化膜片钳等一些新技术。
膜片钳技术基本原理与特点:膜片钳技术本质上也属于电压钳范畴,两者的区别关键在于:①膜电位固定的方法不同;②电位固定的细胞膜面积不同,进而所研究的离子通道数目不同。电压钳技术主要是通过保持细胞跨膜电位不变,并迅速控制其数值,以观察在不同膜电位条件下膜电流情况。因此只能用来研究整个细胞膜或一大块细胞膜上所有离子通道活动。目前电压钳主要用于巨大细胞的全性能电流的研究,特别在分子克隆的卵母细胞表达电流的鉴定中发挥着其他技术不能替代的作用。该技术的主要缺陷是必须在细胞内插入两个电极,对细胞损伤很大,在小细胞如神经元,就难以实现,又因细胞形态复杂,很难保持细胞膜各处生物特性的一致。膜片钳系统有如下应用局限性:大部分的纪录对象为化细胞,而对于需要贴壁生长的大多数正常细胞。

脑片膜片钳实验全细胞记录:用可视化膜片钳寻找清楚、且表面光滑、折光性较好的突触后神经元。在加了正压后,将记录电极移入脑片视野中,并接近事先选好的神经元,然后,调整电极与神经元的相对位置,利用负压形成稳定的高阻封接。用短簇的脉冲负压使细胞破膜,稳定2~3分钟,观察封接测试波形起始段与基线间的差值是否在100pA以内,封接电阻是否大于200M,如果是,且较稳定,再迅速补偿串联电阻和慢电容,舍弃串联电阻大于30M的细胞,且在记录过程中监测串联电阻的变化,当变化大于20%时,中止记录。如果细胞状态不好,就马上重新制备脑片,以提高实验效率。膜片钳使用操作注意:实验结束后必须关闭实验室的水电,检查实验室门窗。黄山细胞生物学膜片钳成像原理及步骤
膜片钳使用操作注意:不得在本机电脑下载别的软件,拷数据时需用实验室配置的U盘。无锡药理学膜片钳技术原理及步骤
膜片钳的应用:对单细胞形态与功能关系的研究:将膜片钳技术与单细胞逆转录多聚酶链是反应技术结合,在全细胞膜片钳记录下,将单细胞内容物或整个细胞(包括细胞膜)吸入电极中,将细胞内存在的各种mRNA全部快速逆转录成cDNA,再经常规PCR扩增及待检的特异mRNA的检测,借此可对形态相似而电活动不同的结果做出分子水平的解释或为单细胞逆转录多聚酶链式反应提供标本,为同一结构中形态非常相似但功能不同的事实提供分子水平的解释。无锡药理学膜片钳技术原理及步骤
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膜片钳实验中电极制备之分两次拉制,首先次拉长7~10mm,直径小于200μm,在此基础上进行第二次拉制,较终使尖锐端的直径为1~2μm,两步拉制的目的主要是使电极前端的锥度变大,狭窄部长度缩短,因此可降低电极的串联电阻,也可减少全细胞记录时的电极液透析时间。由于膜片微电极较忌沾染灰尘和脏物,更忌触碰尖锐端附近部位,所以一般要求在使用前制作。抛光:将电极固定于显微镜工作台上,在镜下将尖锐端靠近加热丝,当通电加热时,可见电极尖锐端微微回缩,此时电极变得光滑,且尖锐端的杂质烧去,得到较干净的表面。从而有利于和细胞膜紧密封接,并在封接后更易保持稳定。单细胞分析常结合膜片钳技术获取个体电信号,让研究者更...