非洲猪瘟活疫苗策略可追溯到1960年代,涉及在葡萄牙和西班牙田间条件下使用的减毒非洲猪瘟病毒毒株。然而,这些早期活疫苗导致慢性病变和病例数增加终被停用。近期的进展引入了几种有前景的活非洲猪瘟病毒疫苗候选株,能够在实验环境中提供针对攻毒实验组完全的或接近完全的保护。除了自然发生的变异株外,基因改造的缺失突变株,如“ASFV-G-ΔI177L”、“ASFV-G-ΔMGF”、“ASFV-G-Δ9GL/UK”和“HLJ/18-7GD”,已显示出对抗当前基因型II非洲猪瘟病毒毒株的潜力。此外,CD2ν(EP402R)缺失突变株也显示出一些前景,能够提供针对基因型I和II毒株的保护。天然衍生的非红细胞吸附病毒“Lv17/WB/Rie1”及其衍生物也被探索作为疫苗替代品。值得注意的是,病毒“ASFV-G-ΔA137R”在具有保护特性的缺失突变株中脱颖而出。因此,现在有多种活疫苗候选株可考虑用于潜在批准,其中至少两种已获准在越南市场销售。尽管如此,先前涉及不当使用可能非法疫苗的事件强调,在没有彻底临床评估的情况下,在现实场景中部署活疫苗需要谨慎。 因此,非洲猪瘟弱毒活疫苗的安全性评估要在临床上进行,需要更长时间。中国家庭农场非洲猪瘟管理操作规程及配种有关规定

八方同创深耕并致力于猪场非洲猪瘟防控的经历提醒猪场,近期的研究再次表明,ASFV在4℃、22℃和40℃时稳定,在EMEM中培养24h后,损失不到10个50%血细胞吸附剂量(HAD50)/mL。组织中的ASFV可以在深度冷冻(-70℃)条件下存活多年而没有明显的滴度损失,但在20℃时会逐渐失去活性,但仍可存活至少105周。在4℃时,病毒在培养基中非常稳定,至少在61周内保持活性。在较高温度下,ASFV失活相对较快,在37℃下,ASFV在细胞培养基中可保持活性11~22d,但在50℃时,只有少部分病毒保持活性,而在60℃时,15min后就检测不到活毒粒子。泰国仔猪非洲猪瘟发病症状表现五级生物安全是指由外到内的分区管理,污区、缓冲区、生活区、生产区、猪舍。跨区需要消毒、换鞋衣、洗手。

八方同创深耕并致力于猪场非洲猪瘟防控的经历提醒猪场,非洲猪瘟阳性场采样检测方案如下:1、首头检测到抗原(核酸)阳性异常猪时及时淘汰同槽或周边密接猪群,离开猪圈后同时检测抗原抗体(P30/P54)。2、快速排查阳性猪群14天内的猪流、人流、物流情况,并采样检测、消毒。3、爆发后采集所有公猪血样、咽拭子、栏内拭子进行抗原(核酸)抗体检测,如果有异常猪或阳性公猪,排查1个月内配种、查情记录,并对相应母猪采样(三根棉签)检测。如果外购猪精,需要对留样进行排查。4、当猪群出现不规律爆发点时,对次密猪群进行“一天两采”(或两次不超12小时,可混样),连续检测3天抗原(核酸),淘汰阳性猪。5、阳性猪群淘汰后,连续稳定14天后,轮转怀孕母猪上产床前母猪检测抗原(核酸)抗体,阴性后轮转。6、分娩当天,对异常母猪采咽拭子、血,检测抗原、抗体;断奶后按5%比例检测抗体。7、稳定一个月后,全群母猪普检P72抗体,间隔15天再普检一次P72抗体,淘汰抗体阳性猪;稳定三个月后停止。
非洲猪瘟病毒的初级复制发生在离病毒进入点相近的淋巴结的单核细胞和巨噬细胞中。因此,在经口或口鼻暴露的情况下,扁桃体和下颌淋巴结的单核细胞和巨噬细胞首先受累。随后,病毒通过血液和/或淋巴系统传播到次级复制位点,如淋巴结、骨髓、脾脏、肺、肝和肾。大多数非洲猪瘟病毒分离株与红细胞膜结合,并在阳性猪中引起红细胞吸附。然而,一些分离株不诱导红细胞吸附。虽然非洲猪瘟病毒主要在髓单核细胞中复制,但它也在内皮细胞、肝细胞、肾小管上皮细胞和中性粒细胞中复制。普遍认为,髓单核细胞的损坏是非洲猪瘟发病机制的关键因素。此外,非洲猪瘟病毒通过调节宿主细胞因子引起免疫抑制,导致过度的组织炎症和细胞凋亡。此外,髓样细胞的破坏导致细胞成分(即危险信号)的释放。当单核细胞/巨噬细胞被侵害时,它们分泌多种介质,包括促炎细胞因子,如白细胞介素-1、IL-6和肿瘤坏死因子α(TNF-α)。这些细胞因子能够触发急性期反应、炎症、内皮细胞受损和细胞凋亡。TNF-α起关键作用,因为它能够诱导血管舒张和通透性增加并调节血管内皮细胞的受损状态(促凝/抗凝)。此外,TNF-α参与细胞凋亡的调节。八方同创提醒:非洲猪瘟病毒对pH值耐受范围广,但是对PH值小于3.8的酸和PH值大于12.3的碱敏感。

非洲猪瘟病毒基因组长度在170至193kb之间变化,包含150-167个开放阅读框。已鉴定出超过68种病毒蛋白,但其中一些的功能仍未知。基因组由一个约125kb的保守中心区域和两个包含五个多基因家族(MultigeneFamilies,MGFs)的可变末端组成(Yáñezetal.1995)。在MGF基因内发生长达20kb的复制区域缺失和插入,表明这些区域可能有助于产生抗原变异,从而帮助非洲猪瘟病毒逃避宿主免疫系统。历史上,非洲猪瘟病毒基因分型基于B646L基因(编码p72蛋白)的部分测序(Achenbachetal.2017;Quemboetal.2018)。这种方法通过分型基因组的其他部分得到辅助,例如编码p54、p40或CD2v的部分,或对基因间区进行测序(Gallardo,Fernandez-Pinero,etal.2014)。虽然单独对p72进行基因分型无法完全阐明每个地区分离株的变异性,但它仍是对不同田间分离株进行流行病学追踪易得且经济的方法(Dinhobletal.2024)。在条件允许的情况下,使用下一代测序技术生成全基因组比较适合用于深入了解基因组流行病学和病毒进化(J.Forth,L.Forth,etal.2019;J.Forth,Calvelage,etal.2023)。非洲猪瘟控制后,复产前,八方同创建议对病毒的传入、扩散进行复盘,然后查缺补漏、猪场改造、人员培训。菲律宾雨季非洲猪瘟科研成果分享
规模化猪场从2020年开始配备实验室,开展非洲猪瘟病毒的自检,至2023年底,这一比例已达到90%。中国家庭农场非洲猪瘟管理操作规程及配种有关规定
八方同创深耕并致力于猪场非洲猪瘟防控的经历提醒猪场,猪场采样监测发现阳性猪的处理措施要点有:1、成立专门的淘猪组淘汰处理阳性猪,进入车间着防护服、防护帽、鞋套、手套;2、铺膜(从栏舍门外到栋舍外转猪车),铺成“U”型路线,3、规划赶猪路径,寻找从阳性猪到出口比较好路径,比较好路径,是经过健康猪只区域少,容易铺膜处理、猪只不容易咬破铺膜,从健康猪只尾部经过的移动路线;4、赶猪,赶猪人员着防护服、防护帽、鞋套、手套进栏赶猪,完成后,用烧碱浇洒栏舍消毒,拆叠收膜退出猪舍单元,鞋套只能在膜上内部,不可踏到地面上,更不可到达猪舍其它区域;5、赶猪工具不可留置在猪舍,必须移出浸泡消毒;6、毒,落实“动猪必消毒”,淘猪组撤离后,本单元饲养员着防护服、防护帽、鞋套、手套负责本单元的消毒,饲养员不参与淘汰阳性猪。7、出猪舍,分净道污道的猪舍,淘猪组,饲养员工作完成后一律从污道出来进行洗消,不区分净道污道的猪舍,淘猪组,饲养员工作完成后一律在猪舍门内脱去防护服、防护帽、鞋套、手套装入舍外垃圾袋,再移出栋舍外焚烧处理。中国家庭农场非洲猪瘟管理操作规程及配种有关规定
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